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一、实验试剂
1、碳酸氢盐/碳酸盐包被缓冲液 (100 mM)
2、PBS
3、封闭液
4、洗涤液
5、抗体稀释缓冲液
二、实验步骤
1. 包被抗原
1) 用 PBS 或碳酸盐缓冲液稀释抗原至终浓度 20 μg/ml。吸取 50 μl 稀释抗原到 PVC 酶标板上的*排孔,按要求往后进行系列稀释。
2) 酶标板上覆盖封口膜,室温孵育 2 小时,或者 4 °C 过夜。孵育时间需要优化。
3) 倒掉包被液,用 PBS 洗板 3 次,每孔 200 μl。在水池上轻甩倒掉洗液,在纸巾上轻拍酶标板除去残留液体。
2. 封闭
1) 用含 5% 脱脂奶粉或含 5% 血清的 PBS 缓冲液封闭酶标板上剩余的蛋白结合位点,每孔加 200 μl。也可用其他封闭剂如 block ACE、BSA(牛血清蛋白)代替。
2) 封口膜覆盖酶标板室温至少孵育 2 小时,或者 4 °C 过夜。
3) PBS 洗板 2 次。
3. 加一抗和二抗进行孵育
1) 每孔加入 100 μl 稀释好的一抗。
2) 封口膜覆盖酶标板室温孵育 2 小时,孵育时间需要进行优化。通常 2 小时孵育即可获得足够强的信号,但如果获得的信号较弱时,可4 °C 孵育过夜获得较强信号。
3) PBS 洗板 4 次。
4) 加标记二抗,每孔 100 μl。稀释到浓度(参照说明书),使用前用封闭液现配。
5) 封口膜覆盖酶标板室温孵育 1-2 小时。
6) PBS 洗板 4 次。
4. 检测
1) 用多通道吸液器向每孔加入 100 μl(或 50 μl)底物。
2) 显示出足够深的颜色后,加终止液每孔 100 μl(如有必要)。
3) 酶标仪读取吸光度值(光密度)。
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