商品介绍:
测定意义 DHAR存在于细胞质、线粒体和叶绿体中。DHAR催化GSH还原DHA生成AsA和GSSG,调控细胞AsA/DHA比值,是抗坏血酸-谷胱甘氧化还原循环的关键酶。提高植物体内的 DHAR 活性,可提高植物食品中AsA含量,进而提高植物食品的营养品质。 测定原理: DHAR催化GSH还原DHA生成AsA,通过测定DHA减少速率,计算DHAR活性。 实验中所需仪器及设备: 研钵、冰、低温离心机、紫外分光光度计/酶标仪、1mL石英比色皿、可调式移液器和蒸馏水。 |
产品属性:
产品名称 | 规格 | 检测方法 | 货号 |
50管/48样 | 紫外分光光度法 | FS-01S63287 |
样本前处理步骤:
样本处理前须知
公司产品仅用于科研处理任何样本时,都必须注意:
(1) 实验中必须使用一次性吸头,在吸取不同的试剂时要更换吸头(2)实验前须检查各种实验器具是否干净,必要时对实验器具进 行清洁,避免污染干扰实验结果。
(a)组织样品处理方法: 1、 称取5±0.05g组织样品于50ml离心管中,先加入3ml已稀释好的样品提取液震荡2min;再加入10ml乙腈,充分震荡5min, 2、 加入2g中性氧化铝;震荡2min ,室温4000r/min以上,离心10min;; 3、 取6ml上清液于干净离心管中,加入5ml二氯甲烷震荡3min ,室温4000r/min以上,离心10min;; 4、 取下层清澈液体于玻璃管中,加入20ul氧化剂混匀,在56℃条件下氮气或空气流吹至*干燥; 5、 加入1ml复溶液,充分溶解干燥残留物。 6、 取100ul 上清液与100ul 已稀释好的复溶液充分混合30s, 7、 取50ul进行分析。 样本稀释倍数: 1倍 | (b)水样品处理方法: 1、取50ul 上清液与450ul 已稀释好的复溶液充分混合30s, 2、取50ul进行分析。 样本稀释倍数:10倍
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实验通用规则:
1、将液体加到酶标孔中时,避免枪头和孔内液体接触,可使枪头上的液滴和孔壁接触,液滴会自然流下去。
2、用枪吸取液体时速度不能太快,以免产生气泡而使吸取量不准确。
3、温浴时,要用不干胶或胶带纸封好酶标板,防止水分的蒸发。
4、洗液不够时,可用蒸馏水自行配制PH7.4,0.02M的磷酸缓冲液,加入0.1%的吐温20作为洗液。加入1/1000的叠氮钠后可长期保存。
5、实验时,要使底物避光保存。
6、洗板时,每次洗液加入后,应静置1分钟,使清洗更加*。没有洗板机时,倒去液体后,要将酶标板在报纸或毛纸上用力拍干。
7、要在实验前1小时将试剂盒从冰箱中取出,使各种试剂都恢复到室温,以使结果更稳定。
8、吸取液体时,要用量程和需要量接近的枪去吸,减少误差。
9、要配备20ul、50ul、100ul、1000ul和排枪各一支。吸取不同的液体后,要更换枪头。即使是吸取标准品时。
10、液体全部加完后,可将酶标板在桌子上平行轻轻晃动30秒,混匀液体。也可以用酶标仪的晃动功能。
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