基因治疗研究、药物靶点高效筛选
德国进口Lonza Nucleofector 384孔高通量细胞核转染系统（384-well Nucleofector System，原HT Nucleofector System，简称384孔核转仪），具备Nucleofector技术快速处理、高转染效率、高细胞活力的特点，每孔可设置不同的转染程序，实现1~384样品同时转染，满足CRISPR/Cas9基因编辑筛选、药物靶点研究等高通量转染的需求。
2021年是Lonza Nucleofector高效细胞核转染技术面世20周年，作为非病毒转染方法，大量成功用于原代细胞、干细胞、神经元、难转染细胞系中，文献引用超过10,000篇，多年来帮助推动基因治疗研究、细胞治疗研究、研究的发展。
Lonza 384孔核转仪，作为独立的转染平台，由一个转染384孔板的工作模块、一个提供高压脉冲的电源模块、一个用于设置转染参数的PC端操作软件组成，耗材使用配套384孔电转板nucleocuvete plate（24×16），每孔为20μL体系，每一个孔可分别设置*不同的转染程序，1min内完成全部384个不同样本的快速转染，同时具备高转染效率、高通量、高重复性的特点，广泛应用于阵列cDNA、RNAi、CRISPR文库筛选中，成为药物靶点、疾病机理研究的高效研发工具。
Lonza 384孔核转仪优势
1、高效转染——采用LonzaNucleofector细胞核转染技术，通过针对每种细胞特殊优化的电转染程序，大幅提升转染效率，通过细胞特异性转染液、无铝离子毒害的新型聚合物电极，构建温和转染环境，提升转染效率的同时，提高转染后细胞活力，维持细胞功能完整。
2、高通量，快速处理——每1个孔均可设置特定转染程序，可同时运行384个不同程序，实现真正的高通量转染。1min内可完成1个384孔板的满板转染，可旋转操作盘能够处理2个384孔板，实现快速、规模化处理。
3、低成本——每孔转染细胞数量2E4~1E6个，可用较低的细胞和耗材成本进行高通量的实验优化。
4、线性放大规模——使用384孔核转仪摸索的优化转染条件，可直接用于Lonza其他大体积核转仪模块中，线性放大实验成果。
5、自动化处理——384孔电转板符合SBS标准，可无缝对接自动化液体处理系统，提高实验整体效率，减少人为误差。 
| 尺寸 | 重量 | |
| 工作模块 | 40 cm × 42 cm × 15 cm (15.7 × 16.5 × 5.9 英寸) | 10 kg (22.04 磅) |
| 电源模块 | 13.5 cm × 50 cm × 45 cm (5.3 × 19.6 × 17.7 英寸) | 14 kg (30.86 磅) |
参考文献
1. Gordon, D., Hiatt, J., Bouhaddou, M. et al. Comparative host-coronavirus protein interaction networks reveal pan-viral disease mechanisms. Science, 370, 6521 (2020). /doi/10.1126/science.abe9403#F5
2. Mac Kain, A., Maarifi, G., Aicher, S. et al. 2021. Identification of DAXX As A Restriction Factor Of SARS-CoV-2 Through A CRISPR/Cas9 Screen. /content/10.1101/2021.05.06.442916v1.full
3. Obara, E.A.A., Aguilar-Morante, D., Rasmussen, R.D. et al. SPT6-driven error-free DNA repair safeguards genomic stability of glioblastoma cancer stem-like cells. Nat Commun 11, 4709 (2020). https://doi.org/10.1038/s41467-020-18549-8
4. Monkley, S., Overed-Sayer, C., Parfrey, H. et al. Sensitization of the UPR by loss of PPP1R15A promotes fibrosis and senescence in IPF. Sci Rep 11, 21584 (2021). https://doi.org/10.1038/s41598-021-00769-7
5. Tong, Y., J?rgensen, T.S., Whitford, C.M. et al. A versatile genetic engineering toolkit for E. coli based on CRISPR-prime editing. Nat Commun 12, 5206 (2021). https://doi.org/10.1038/s41467-021-25541-3
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