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  • CytoBuoy野外监测型浮游植物流式细胞仪

CytoBuoy野外监测型浮游植物流式细胞仪

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面议
具体成交价以合同协议为准
  • 型号
  • 品牌
  • 所在地上海
  • 更新时间2023-08-04
  • 厂商性质经销商
  • 入驻年限2
  • 实名认证已认证
  • 产品数量839
  • 人气值21191
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上海泽泉科技股份有限公司(Zealquest Scientific Technology Co., Ltd.)成立于2000年,是一家专注于科研设备研发、系统集成、技术推广、咨询、销售和科研服务的科技型技术企业。公司注册资金3500万元人民币,具有进出口贸易权。


公司总部位于上海浦西,在北京设有分公司,在广州、成都、武汉分别设有代表处。公司全体员工均具有高等教育背景,其中80%的技术研发、技术支持和销售人员具有硕士和博士学位,参加过很多国家和省部级重大科研项目,具有丰富的科研工作经验。公司曾获得上海市高新技术企业、上海市普陀区科技小巨人企业、上海市科技型企业中华全国工商联合会/上海市工商联合会/上海市商会会员单位,曾是上海市专业技术服务平台——生理生态测量与分析平台的依托单位和上海市高新技术成果转化项目承担单位。2012年公司通过了ISO9001质量管理体系认证,获得三A信用资质等级认定,获得普陀区科技小巨人企业认定,成为上海市研发公共服务平台加盟单位和“上海市工商联合会”/“上海市商会”会员单位 。2015年获得“专精特新”中小企业认定。2016年成为“上海市生态学学会常务理事单位”和“上海种子行业协会”会员单位,2017年成为“上海市农业工程学会理事单位”。


上海泽泉科技股份有限公司非常注重自主知识产权的申报和保护,公司及子公司上海乾菲诺农业科技有限公司截止2024年底已获得发明8项、实用新型54项及软件著作9项,国内外科研期刊发表科研论文20多篇。公司还参与承担了国家自然科学基金重点项目(41030529)和水利部948项目(200907)。


公司秉承推进中国生态环境改善、科技兴国的理念,服务涉及机器人与人工智能应用,生命科学多组学研究,植物表型与植物生理生态、生物育种技术平台建设;土壤、环境气象、水文水利与海洋等领域的新技术资讯和产品解决方案,服务对象主要为各级科研单位、高校和政府机构。公司先后为科技部“973”项目和“863”项目、国家科技重大专项、国家科技支撑计划、国家“211”工程和“985”工程、中科院知识创新工程、农业部“948”项目、水利部“948”项目等提供技术咨询、仪器设备、系统解决方案和系统集成服务,为项目的顺利完成提供了有力支持。


多年来,公司积极参与相关领域的学术会议,并定期举办相关仪器设备的技术讲座和培训班,在科研和监测领域产生了积极的反响,获得了良好的口碑。截止2024年底,泽泉科技举办公开技术讲座275多场,参会人员超过15000人次;同时在国内外应邀参加学术会议和展会296多次,与相关领域的客户有非常密切的交流合作。


2014年2月,上海泽泉科技股份有限公司在上海浦东孙桥现代农业园区投资成立了上海乾菲诺农业科技有限公司,建设了AgriPhenoTM “高通量植物基因型-表型-育种服务平台”,为植物科研和育种单位提供全面的样品收集和栽培,实验设计和项目合作,以及表型数据与生物信息学分析综合服务。平台成功主持了上海张江国家自主创新示范区专项发展资金重点项目“泽泉科技高通量植物基因型-表型-育种服务平台”。作为主持单位或合作单位参与了上海市农委和科委的30多项政府科研服务项目以及商业服务项目,如科技兴农种业发展项目“农作物分子育种的技术创新研究”和“青菜高通量表型图谱标准的建立及主要性状分析”、科技兴农重点攻关项目“基于图像分析及三维建模技术的黄瓜长势快速评价方法研究”、 “兰科观赏花卉分子育种技术研究与产业化应用”等。为了紧追世界科技发展水平,开启院企合作建立研究型平台的创新尝试,上海泽泉科技股份有限公司与上海市农业科学院,结合双方各自的优势,于2021年5月在上海农业科学院庄行试验站联合成立“上海市农业科学院庄行综合试验站泽泉科技植物表型技术研究平台”,AgriPhenoTM平台从上海浦东孙桥现代农业园区整体迁出,并入新建的植物表型技术研究平台。目前平台除拥有无人机表型平台、温室型和实验室型高通量表型分析系统外,还拥有现代化温室、生物学实验室、植物生理生态测量设备、农业气象测量系统和专业的数据库平台,已经具备了对植物、动物基因测序与植物表型研究的各类条件。可以承担高通量DNA提取、基因测序服务、分子辅助育种、植物生理生态研究等科研实验任务。同时可以为植物功能基因组、农业育种家提供高通量植物基因型测试、高通量植物表型测试和植物基因型-表型生物信息学数据分析等开放式服务。


近年来,随着“生物技术+人工智能+大数据、信息技术”为特征的第四次种业科技革命不断孕育,国际大型种业公司规模不断扩大,种业市场集中度持续提高。生物育种是种业创新的核心,构建现代生物育种创新体系,强化种质资源深度挖掘,突破前沿育种关键技术,培育战略性新品种,实现种业科技自强自立,是解决种源要害、打赢种业翻身仗的关键,也是牢牢把握住粮食安全主动权的根本保障。在这个大背景下,2022年9月,北大荒垦丰种业、上海泽泉科技联合成立北大荒垦丰种业-泽泉科技生物技术与表型服务中心(KA-BPSC),集中优势资源、整合集体力量,为解决种业种源“卡脖子”技术难题,打赢种业翻身仗贡献力量。


展望未来,上海泽泉科技股份有限公司希望在社会多方资源的支持和关怀下,不断提升自己,为社会提供更多、更优秀的产品和服务!


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CytoBuoy野外监测型浮游植物流式细胞仪
CytoBuoy野外监测型浮游植物流式细胞仪 产品详情
主要功能




1. 专业分析浮游植物细胞,同时具备传统流式细胞仪经典功能1.jpg
2. 可以扫描记录各种光学信号(散射、荧光)的动态变化
3. 可实现高频、原位分析水体微生物群落及优势种变化
4. 可在完整的藻类粒径谱范围内对生物量进行线性评估
5. 可直接分析大尺寸范围的浮游藻类、团体结构,可现场分析微囊藻群体结构变化
6. 可调式PMT可根据检测粒径大小调节检测器灵敏度
7. 流动成像技术可对感兴趣感兴趣的聚群进行圈门设定后专门拍照
8. 的脉冲信号指纹图谱技术,圈门直观方便,更真实反应细胞形态
9. 水下测量(CytoSub)可在整个真光层分析浮游植物动态
10. 可整合入浮标中或其它载体上进行在线监测,可配合CTD对水体做剖面测量
11.实现实验室远程控制基站式自动在线监测,可实现自动检测,无人值守在线监测






测量参数




光学参数:      前向散射FWS、侧向散射SWS,荧光散射FLR、 FLY、 FLO
形态参数:      能同时获得包括细胞和颗粒形态物理特性(数量、长度、大小、形态、粒度、色素、峰数等)、群体特征、脉冲图谱等在内的9个拓扑学指标及最少45组参数
计数:自然水体总颗粒计数,圈门后可集群计数及浓度计算,可实现链状藻单细胞数计数功能
其他测量参数:分析体积、进样速率等






应用领域




1. 海洋生态学与淡水生态学


2. 流域监测与管理


3. 海洋学与湖沼学


4. 有害藻华(HABs)预警


5. 微藻生物技术


6. 河流、水库、湖泊、海洋的监测与管理


7. 监测与管理


8. 水源地、水厂、污水处理厂的水质监测


9. 富营养化研究


10. 藻类环境生物学


11. 水产养殖








选购指南:




一、便携式浮游植物流式细胞仪CytoSense

系统组成:



流式细胞仪分析主机:相干高质量连续固态激光器,标配波长488nm, 可选波长445nm、635nm、640nm、660nm等最多可配置7个检测器(检测通道含FWS L+R、SWS、YF、RF、OF)。
野外便携式外壳:仪器采用碳素纤维外壳,防溅水设计,更轻便(<15kg),整机安装于轻质铝质框,带高质量防震垫。包装于便携式航空箱内。
数据分析系统:含便携式笔记本电脑,预装数据采集软件CytoUSB,和数据分析软件CytoClus
批量处理数据分析软件EasyClus : 需购买MatLab软件配合使用
高速流动成像模块:可选。

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3.jpg4.jpg
      便携式浮游植物流式细胞仪                   Easyclus 粒径分布图                      Easyclus 散点图
系统组成:



主机:浅水版Cytosub (水下20米),含CytoSense所有基本配置

浮标模块:包括浮标、太阳能电池板、充电电池、浮标灯、电子系统、无线传输装置和采样管防水连接器等。根据用户需要,也可扩展为易拆卸浮标模块,这样用户可以非常方便的在CytoSense(室内用)和CytoBuoy(在线监测)间转换。
注意:野外在线监测时不仅于以浮标作为平台,其他平台也可,只要可以具备放置CytoSense的空间及供电即可。同时,增加Bacterial staining module,可实现水体异养微生物自动染色和在线分析,可在线检测藻类、细菌、浮游动物及沉积物等颗粒。具体信息请。


5.jpg









                       CytoBuoy 浮体

CytoBuoy通讯模式:无线通讯



6.jpg




三、水下浮游植物流式细胞仪——CytoSub 


主机:台式机CytoSense是防溅水设计,可以在野外使用,但不能水下使用。CytoSense加上一个水下模块(SUB MODULE)就组成了水下式流式细胞仪CytoSub。
水下模块:一个耐受200 m水深压力的防水外壳,阀门和进样环路部分(包括循环泵),电子控制单元,数采,水下连接器和支架。

cytosub 主机.jpg7.jpg





               Cytosub 主机                         CytoSense CytoSub 转换
工作模式一:AUV搭载




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利用英国国家海洋中心AutoSubAUV搭载CytoSub

工作模式二:水下垂直剖面分析




9.jpg







                             与CTD结合一起测量

注意:此外,水下型浮游植物流式细胞仪CytoSub可应用于浮标,Ferrybox等监测平台,在垂直剖面不同层位获取浮游植物生物量信息,对研究微囊藻沉浮机制,浮游动物、水文、水质等因素对浮游植物生态位影响提供数据依据。

10.jpg11.jpg




                           CytoSense 检测对象

产地:荷兰 CytoBuoy



参考文献
数据来源: Cytometry ,  Goolge scholar等,截至2016年,共收集相关文献近100篇。

1.       Simon Bonato a, Elsa Breton , al e: Spatio-temporal patterns in phytoplankton assemblages ininshore–offshore gradients using flow cytometry: A case study in the eastern English Channel, Journal of Marine Systems 2016,76-83.[CytoSense]

2.       Goran Bakalar & Vinko Tomas, Possibility of Using Flow Cytometry in the Treated Ballast Water Quality Detection, Pomorski zbornik 51 (2016), 43-55

3.       Quan Zhou, Wei Chen, al e: A flow cytometer based protocol for quantitative analysis of bloom-forming cyanobacteria (Microcystis) in lake sediments, Journal of Environmental Sciences 2012, 24(9) 1709–1716

4.       A. Mansour, I. Leblond al.e: Invited Paper: Wireless Sensor Networks for Ecosystem Monitoring & Port Surveillance. (WSCN 2013)

5.       Endymion D. Cooper , Bastian Bentlage al e: Metatranscriptome profiling of a harmful algal bloom.Harmful Algea 37(2014)75-83.

6.       SERGIO A. COELHO-SOUZA, FÁBIO V. ARAÚJO al e: Bacterial and Archaeal Communities Variability Associated with Upwelling and Anthropogenic Pressures in the Protection Area of Arraial do Cabo (Cabo Frio region - RJ). Anais da Academia Brasileira de Ciências (2015) 87(3):1737-1750

7.    Malkassian, A., D. Nerini, al. e: Functional analysis and classification of phytoplankton based on data from an automated flow cytometer. Cytometry Part A 2011, 94A:263-275.  [Cytosense]

8.    Thyssen, M., B. Beker, al. e: Phytoplankton distribution during two contrasted summers in a Mediterranean harbour: combining automated submersible flow cytometry with conventional techniques. Environmental Monitoring and Assessment 2011, 173:1-16. 

9.    Thyssen, M., Denis M: Temporal and Spatial High-Frequency Monitoring of Phytoplankton by Automated Flow Cytometry and Pulse-Shape Analysis. Springer Netherlands 2011:293-298. 

10.   Vidoudez, C., J. C. Nejstgaard, al. e: Dynamics of Dissolved and Particulate Polyunsaturated Aldehydes in Mesocosms Inoculated with Different Densities of the Diatom Skeletonema marinoi. Marine Drugs 2011, 9: 345-358. 

11.   Hansen, B. W., H. H. Jakobsen, al. e: Swimming behavior and prey retention of the polychaete larvae Polydora ciliata. Journal of Experimental Biology 2010:3237-3246. 

12.   Pereira GC, Figuiredo ARd, Jabor PM, Ebecken1 NFF: Assessing the ecological status of plankton in Anjos Bay: a flowcytometry approach. Biogeosciences Discuss 2010, 7:6243–6264.  [cytobuoy]

13.   Barofsky, A., Simonelli P, al e: Growth phase of the diatom Skeletonema marinoi influences the metabolic profile of the cells and the selective feeding of the copepod Calanus spp. J Plankton Res 2009, 32:263-272.  [CytoBuoy]

14.   Donk V, E., Cerbin S, al e: The effect of a mixotrophic chrysophyte on toxic and colony-forming cyanobacteria. Freshwater Biology 2009, 54:1843-1855. 

15.   Pereira, C. G, Granato A, al. e: Virioplankton Abundance in Trophic Gradients of an Upwelling Field. Brazilian Journal of Microbiology 2009, 40:857-865.  [CytoBuoy]

16.   Thyssen, M., Mathieu D, al. e: Short-term variation of phytoplankton assemblages in Mediterranean coastal waters recorded with an automated submerged flow cytometer. J Plankton Res 2008, 30:1027-1040.  [Cytosub]

17.   Thyssen, T. M, Garcia N, al. e: Sub meso scale phytoplankton distribution in the north east Atlantic surface waters determined with an automated flow cytometer. Biogeosciences Discuss 2008, 5:2471-2503.  [Cytosub]

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19.   Takabayashi, M., Lew K, al e: The effect of nutrient availability and temperature on chain length of the diatom, Skeletonema costatum. J Plankton Res 2006, 28:831-840.  [CytoSense]

20.   Takabayashi, M., Wilkerson FP, al. e: Response Of Glutamine Synthetase Gene Transcription And Enzyme Activity To External Nitrogen Sources In The Diatom Skeletonema Costatum (Bacillariophyceae). J Phycol 2005, 41:84-94.  [Cytobuoy]

21.   Dubelaar, J. GB, Geerders PJF: Innovative technologies to monitor plankton dynamics. Sea Technol 2004, 45:15-21.  [CytoSub]

22.   Dubelaar, J. GB, Geerders PJF, al. e: High frequency monitoring reveals phytoplankton dynamics. J Environ Monit 2004, 6:946-952.  [Cytosense]

23    Cunninghama, A., McKeea D, al e: Fine-scale variability in phytoplankton community structure and inherent optical properties measured from an autonomous underwater vehicle. J Mar Syst 2003, 43:51-59. 

24.   Dubelaar, J. GB, Gerritzen PL: CytoBuoy: a step forward towards using flow cytometry in operational oceanography. Sci Mar (Barc) 2000, 64:255-265.  [CytoBuoy]

25.   Dubelaar, J. GB, Jonker RR: Flow cytometry as a tool for the study of phytoplankton. Scientia Marina 2000, 64.  [CytoBuoy]

26.   Jonker R, Droben R, Tarran G, Medlin L, Wilkins M, Garcla L, zabala L, boddy l: Automated identification and characterisation of microbial populations using flow  cytometry: the AIMS project. scientia marina 2000, 64:225-234.  [Cyto]

27.   Woodd-Walker, S. R, Gallienne CP, al e: A test model for optical plankton counter (OPC) coincidence and a comparison of OPC-derived and conventional measures of plankton abundance. J Plankton Res 2000, 22:473-483. 

28.   Dubelaar, J. GB, Gerritzen PL, al e: Design and first results of CytoBuoy: A wireless flow cytometer for in situ analysis of marine and fresh waters. Cytometry 1999, 37:247-254.  [CytoBuoy]

29.   Wilkins, F. M, Boddy L, al e: Identification of Phytoplankton from Flow Cytometry Data by Using Radial Basis Function Neural Networks." Appl Environ Microbiol 1999, 65:4404-4410. 

30.   Jonker, R. R, Meulemans JT, al e: Flow cytometry: A powerful tool in analysis of biomass distributions in phytoplankton. Water SciTechnol 1995, 32:177-182.  [Cytosense]

31.   Jonker, R. R, G. B. J. Dubelaar, al. e: The European Optical Plankton Analyser: A high dynamic range flow cytometer. Scientia Marina 1994. 

32.   Dubelaar, G. B. J., A. Groenewegen ea: Optical plankton analyser: a flow cytometer for plankton analysis, II: Specifications. Cytometry 1989, 10:529-539.  [OPA]

       33.   Peeters, J. C. H., G. B. J. Dubelaar, al e: Optical plankton analyser: A flow cytometer for plankton analysis, I: Design considerations. Cytometry 1989, 10:522-528.  [OPA]







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