干细胞培养之“收到细胞的处理方式”

冷冻干细胞解冻程序:
2.1.依据细胞株数据单之基础培养基种类、血清种类和其它之成份和比例，制备培养基。绝大多数之细胞均无法立即适应不同之基础培养基或不同之血清种类，若因实验需要，必须有所不同时，务必以缓慢比例渐次改变培养基组成，确定细胞适应后，方进行所需之实验。
2.2.FBS(fetalbovineserum,胚牛血清),CS(calfserum,小牛血清)和HS(horseserum,马血清)，对细胞而言差异极大，请务必依据细胞株资料单之血清种类培养之。
2.3.将洁特培养基置于37C水槽中回温，回温后喷以70%酒精并擦拭之，移入无菌操作台内。取出洁特冷冻管，立即放入37C水槽中快速解冻，水面高度不可接近或高过冷冻管之盖沿，否则易发生污染。轻摇洁特冷冻管使其在1分钟内全部融化后，以70%ethanol擦拭冷冻管外部，移入无菌操作台内。
2.4.依据细胞种类和浓度，于无菌操作台内取10ml培养基加至T25或T75flask中。取出已解冻之细胞悬浮液，缓缓加入T25或T75JET培养瓶内之培养基，混合均匀，放入37C，5%CO2培养箱培养。
2.5.对绝大多数细胞而言，1%以下之冷冻保护剂DMSO，不会对细胞之贴附或活化有不良影响，不需立刻由解冻细胞中去除，待第二天确定细胞生长或贴附良好后再去除即可。惟对极少数因对DMSO敏感或会造成细胞分化之细胞，需立即去除DMSO者，则可将解冻后之细胞悬浮液放入5-10ml洁特培养基中，离心300xg(约1000rpm)，5分钟，小心移去上清液，加入适量新鲜的洁特培养基，将细胞均匀混合后，转移至洁特培养瓶中，再放入37°C，5%CO2培养箱培养。
No.2
收到T25JET培养瓶培养出的细胞时，处理方式为︰
1.于寄送过程中，为避免起泡造成细胞脱落死亡，T25flask均加满洁特培养基。请检查培养瓶的外观，并于显微镜下观察细胞生长状况和有无污染现象，若有任何问题，不要打开盖子，请立即通知细胞实验室。
　2.将原封之T25JET培养瓶静置于37°C，5%CO2培养箱中，使干细胞回温至37°C，并让运送过程中少数脱落的细胞可再附着生长。隔天后，于无菌操作箱内取出JET培养瓶内之培养基，(取出之培养基可以再使用)，仅留约5-10ml培养基于JET培养瓶内，依一般培养方式再将细胞置入培养箱中，或细胞已长满盘，则将细胞做传代培养。
121-33-5     1g        香兰素熔点标准物标准品    
121-33-5     200mg    Vanillin     香兰素标准品    
121412-77-9    200mg    Cefprozil (Z)-Isomer    *（Z）-异构体标准品    
121-54-0    500mg    Benzethonium Chloride    苄索氯铵标准品    
121-57-3     200mg    Sulfanilic Acid     对氨基苯磺酸标准品    
121-59-5    200mg    Carbarsone    卡巴胂标准品    
121-66-4     25mg        硝唑尼特相关物质A标准品    
12167-74-7    1g        磷酸三钙标准品    
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