产品详细介绍：
PLI－90细胞显微注射仪
在数字设定的时间间隔内，通过对其施加一定大小的压力，PLI－90 皮升注射器可以可靠将一很大容积范围内的物质通过微量移液管进行输送。在固定细胞的同时，压缩空气使仪器的操作者能够同时将毫微微升至毫升的所需容积的物质准确输送至所需部位。不管您是需要将较大量的物质注射进移液管中，还是要将极少量的物质注射进哺乳动物的细胞核中，PLI－90 皮升注射器都是您实验的非常合适的选择。
PLI-90细胞显微注射仪特点：
简易性： PLI－90皮升注射器只提供了注射、平衡以及清除正压功能，所以与PLI－100皮升注射器相比，它是一个更廉价的选择。PLI－90皮升注射器的这种简易性，
较PLI－100皮升注射器更易于推广使用。
两种包装可供选择：
普通型和增强型：
普通型PLI－90皮升注射器包括了一个输入和输出软管、手柄、电源线以及安装手册。
增强型除提供有普通型所包括的所有部件外，还包括了一个脚踏开关、移液管架以及输入软管适配器。
三种压力――
注射、平衡以及清除。
消除了注射后的移液管反流。
从毫微微升至毫升容积的可重复输送。
选购指南：PLI－90皮升注射器是那些不需要真空负压来填注移液管筒，或者在使用注射器时，并不必需要固定吸管来固定细胞的使用者们的理想选择。
细胞显微注射仪PLI-90参数：
在数字设定的时间间隔内，通过对其施加一定大小的压力，PLI－90 皮升注射器可以可靠将一很大容积范围内的物质通过微量移液管进行输送。在固定细胞的同时，压缩空气使仪器的操作者能够同时将毫微微升至毫升的所需容积的物质准确输送至所需部位。不管您是需要将较大量的物质注射进移液管中，还是要将极少量的物质注射进哺乳动物的细胞核中，PLI－90 皮升注射器都是您实验的非常合适的选择。
PLI-90细胞显微注射仪特点：
简易性： PLI－90皮升注射器只提供了注射、平衡以及清除正压功能，所以与PLI－100皮升注射器相比，它是一个更廉价的选择。PLI－90皮升注射器的这种简易性，
较PLI－100皮升注射器更易于推广使用。
两种包装可供选择：
普通型和增强型：
普通型PLI－90皮升注射器包括了一个输入和输出软管、手柄、电源线以及安装手册。
增强型除提供有普通型所包括的所有部件外，还包括了一个脚踏开关、移液管架以及输入软管适配器。
三种压力――
注射、平衡以及清除。
消除了注射后的移液管反流。
从毫微微升至毫升容积的可重复输送。
选购指南：PLI－90皮升注射器是那些不需要真空负压来填注移液管筒，或者在使用注射器时，并不必需要固定吸管来固定细胞的使用者们的理想选择。
细胞显微注射仪PLI-90参数：
| 输入气压 | 70至105磅/平方英寸（480至720千帕） |
| 注射压力 | 0.2至60磅/平方英寸（413千帕），大小可调，多向转动控制 |
| 平衡压力 | 0.1至3.5磅/平方英寸（68.9千帕）,大小可调,多向转动控制，依据需要也可使用其他的压力范围。 |
| 清除压力 | 输入气体压力，不可调 |
| 注射时间 | 0.01至0.99秒，10毫秒为间隔；1至99秒，1秒钟为间隔 |
| 压力显示 | 数字显示，三位半数字 |
| 持续时间模式 | 内部定时或者外部门控 |
| 触发模式 | 脚踏或面板开关控制 |
| 压力读数 | 注射，平衡，清除，输出端 |
| 电压 | 100/110/220/240伏特 |
| 使用功率 | 220瓦特 |
| 脚踏开关 | 注射和门控可选 |
| 附件提供 | 输入、输出软管以及电源线 |
| 重量 | 6.8千克（15磅） |
| 高×宽×直径 | 11×38×25.5厘米（5×15×10英寸） |
以细胞内微注射和微灌注技术为基础的玻璃针头(Glass Needle)（精细的玻璃微量毛细移液管）的使用，已经在越来越多的实验生物学研究领域中成为一项非常普遍的操作方法，比如在体外受精、转基因中等等。这些技术最恰当的话应当称其为显微外科操作，因为这些操作是通过单个的或多个的筒状玻璃微量移液管、精确的定位装置（显微操纵器）以及微量注射器或微量灌注器来在单个的细胞上进行的。这些操作中所使用的微量移液管是用一毛细管拉针器(pipette puller)来制作的，先将玻璃毛细管加热到其熔化的温度，再将其拉制成所需的合适大小的直径和锥形，微量移液管小头的直径（小至0.2微米）与纤维操纵器的高精度相关，它可以用于精准的移液。这种精确度可以为各种类型和任意大小的细胞提供亚皮克升级或0.1微米(micron)范围内的精确的、重复性良好的细胞内和细胞旁注射。通过运用直接的水压（压力注射）或者不通过使用水流，而通过施加一电场来使带电离子运动（离子电渗法），都可以获得将微量移液管中的物质挤喷出去的效果。
细胞显微注射仪Footnotes and References
1. McCaman, R.E. etal “ A pressure system for intracellular and extracellular ejectionsof microliter volumes” Brain Research 142, 141 (1977).
2. Palmer, M.R. et al.,“Physical and physiological characteristics of micropressureejection ... from ... pipettes”. Neuropharmacology-y 19, 931-938 (1980).
3. Hiramoto,Y. Exp. Cell Res. 27, 416-426 (1962). Pneumatic, micrometer syringe,mercury. See Kiehart, D.P. Methods Cell Biol. 25, 13ff (1982) for a carefulexplanation.
4. Graessmann. A. Exp. Cell Res. 60, 373-382 (1970).
5. Mario Capecchi (private communication).
6. Dennis Stacey (private communication).
7. 10 micron pipettes would be suitable for frog oocytes, but there is little need for the sizes between 1.5 and 10 microns.
8. Pipettes will have more than one taper angle if the pulling force and/ or heatchange during pulling. (Two stage pullers give two angles. for example.) Delivery rate depends on the angle nearest the tip.
9. Stephens, D.L. et al,“ Easy to use equipment for the accurate microinjection of nanoliter volumes into ... oocytes”Anal. Biochem. 114, 299-309 (1981).
10. Brinster, R. L.,et al, Proc. Natl. Acad. Sci. 82, 4438-4442 (1985), DNA into mouse oocytes.
11. Webster,D. R., et al J. Cell Biol. 105, 265-276 (1987), tubulin into human fibrob-lasts and hamster ovary cells.
12. Palmer, M. R. et al, in Electrophysiological Techniques in Pharmacology, pages 169-187 (1986),Alan R. Liss, Inc. Various materials onto mammalian neurons.
13. mRNA into Xenopus oocytes- see footnote 9.
14. Stacey, D.W. et al, Exp. Cell Res. 171, 232-242 (1987), ras protein into tumor cells.
15. Pasti, G., et al, Nature 324, 375-377 (1986), protein kinase C into Swiss 3T3 cells.
16. Silver, R.B. Proc. Nat. Acad. Sci. 83:4302-4306 (1986) antibodies into sａnd dollarembryo
17. de Laat,A.M. and Blaas,J.Pl. Sci.50:161-169 (1987) cytoplasmic organelles into plant protoplasts
